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PCR實驗室科學 | 如何擴增所需的目標片段

發(fā)布時間:2023-12-18     發(fā)布作者:上海通蔚生物

  1983年,美國生物化學家卡里·穆利斯(Cary Mullis)提出了核酸體外擴增的想法,并于1985年發(fā)明了聚合酶鏈式反應(PCR)過程,從而誕生了PCR技術。1988年,Saiki等人成功地使用從植物中分離出來的耐熱DNA聚合酶自動擴增DNA DNA聚合酶使PCR變得更加方便,這使其成為一種通用的分子生物學技術。

 

  在傳統(tǒng)PCR技術在分子生物學各個領域廣泛應用時,常常出現樣本量小、樣本珍貴、非特異性擴增等現象。非特異性擴增可能由以下原因引起:常規(guī)設備DNA聚合酶的最佳溫度為72℃,此時酶活性最高,酶活性下降。此外,DNA聚合酶在低溫下被激活,導致錯誤的引物序列延伸并形成引物二聚體。熱啟動高保真酶也會出現非特異性擴增,主要是由于PCR條件(Mg2+、退火溫度、循環(huán)次數),ETC)。非特異性可能導致:目標擴增子產量低、目標擴增子靈敏度降低、下游應用效率低。

 PCR實驗

  今天上海通蔚將帶大家科學討論PCR如何放大所需的目標片段,通常方法如下:

 

  1、直接PCR

 

  直接PCR是指直接從樣品中擴增靶DNA,無需分離或純化核酸。

 

  在高溫變性步驟中,細胞或組織等樣品在特殊配制的緩沖液中裂解,然后釋放DNA。直接PCR簡化了工作流程并減少了操作步驟。從而防止純化步驟中DNA丟失。菌落PCR鑒定是現代分子生物學實驗室直接PCR最典型的應用。簡單處理或稀釋后的樣品可直接進行PCR。

 直接PCR

  2、梯度PCR

 

  梯度PCR和降落PCR都優(yōu)化反應體系的退火溫度,但原理不同。

 

  梯度PCR用于不清楚退火溫度的情況。為確定最佳退火溫度,多管PCR同時運行PCR儀一臺(需要支持設置梯度退火溫度的PCR儀)。將每個管放置在儀器內的不同列或行中,并單獨運行PCR(例如,對于50-60°C的溫度范圍,將6個管放置在50°C52°C54°CC).C、56°C)、58°C60°C,分別)。最后確定最佳退火溫度,并在此退火溫度下進行常規(guī)PCR擴增。

梯度PCR

 

  3、降落PCR技術

 

  PCR系統(tǒng)的許多組件如引物、模板、Mg2+dNTP等都可能導致實驗結果不準確??赡馨l(fā)生。對于復雜的基因組DNA模板,傳統(tǒng)PCR常常伴隨非特異性擴增,無法產生理想的目標產物。為了解決PCR中非特異性擴增的問題,Dong等人。1991年,他發(fā)明了降落PCRTD-PCR)技術。

 

  降落PCR與梯度PCR相比具有以下優(yōu)點:首先,選擇合適的梯度PCR退火溫度需要多次反應或多管反應。其次,即使通過多次實驗確定了最佳退火溫度,如果更換其他PCR設備并進行相同的擴增,最佳退火溫度也可能會發(fā)生變化。這時,需要重新確定最佳退火溫度。而降落PCR只需一次反應即可獲得良好的擴增效果,并且避免了對每對引物最佳復性溫度的優(yōu)化和確定。此外,降落PCR顯著緩解了儀器性能對擴增效果的限制。

 

  原則

 

  PCR中的退火溫度會影響擴增結果。隨著退火溫度升高,擴增特異性增加,但擴增效率降低。在降落PCR開始時,進行高溫擴增以獲得特異性擴增產物。目的基因豐度增加后,降低擴增溫度可提高擴增效率。將退火溫度降低至發(fā)生非特異性擴增的水平可為特異性擴增產物提供幾何優(yōu)勢。其余反應中的非特異性位點由于豐度較低而無法與特異性位點競爭,獲得單一主要擴增產物。

 

 退火溫度設定

 

  通常,降落PCR的退火溫度范圍為高于Tm5°C至低于Tm值約10°C,最高可達15°C。在每個溫度下循環(huán)12次,然后在較低的退火溫度下循環(huán)10次。

 

  應用

 

  Touchdown PCR適用于經常更換引物的實驗。Touchdown PCR可以讓您快速、特異地獲得所需的擴增片段,而無需知道Tm值,也無需費力確定最佳Tm值?,F在許多PCR儀器都包含設置降落PCR的程序,該程序廣泛用于研究。

 

  4、巢式PCR

 

  巢式PCRPCR的一種變體。使用兩對PCR引物對(而不是單個引物)來擴增特定片段。第一對PCR引物擴增片段,與傳統(tǒng)PCR類似。第二對引物是嵌套引物(因為它們位于或嵌套在第一個片段內),a>結合在第一個擴增子內并特異性擴增第一個擴增子內的DNA片段。

 

 優(yōu)勢

 

  如果在第一次擴增中產生了錯誤的片段,該區(qū)域在第二輪中被第二對引物對擴增的概率非常低。。因此,巢式PCR具有較高的擴增特異性。

 

  實驗過程

 

  步驟1


         第一對引物(以綠色顯示)與DNA目標模板結合。由于特異性不足,它還可能與具有相似結合位點的其他片段結合并擴增靶標。


第二步:使用第二對橙色引物與第一步擴增的目標片段結合,進行第二次擴增。這些引物嵌套在第一個PCR產物中,因此非特異性擴增的PCR產物包含兩個引物對。它不太可能包含結合位點。這可以防止第二組引物擴增非目標片段。這種嵌套式PCR擴增確保了第二次PCR擴增的PCR產物很少或沒有受到來自替代引物目標序列的非特異性擴增PCR產物的污染。

 

上述是PCR擴增實驗,為大家介紹實現擴增的一些方法,這些方法是我在此領域為大家總結的經驗,希望大家在實驗過程可以根據自身的需求進行選擇。上海通蔚有PCR試劑盒,如果您需要了解更多PCR試劑盒,歡迎咨詢。