發(fā)布時(shí)間:2023-12-22 發(fā)布作者:上海通蔚生物
抗體是各種實(shí)驗(yàn)室技術(shù)的強(qiáng)大研究工具。在這里,上海通蔚給大家介紹一些檢測(cè)抗體的常用方法,這些方法包括酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定 (ELISA)、酶聯(lián)免疫斑點(diǎn) (ELISPOT)、蛋白質(zhì)印跡 (WB)、免疫沉淀 (IP) 和染色質(zhì)免疫沉淀 (ChIP)、免疫組織化學(xué) (IHC)、免疫細(xì)胞化學(xué)(ICC)、流式細(xì)胞儀和 FACS。
內(nèi)容
2. 酶聯(lián)免疫斑點(diǎn) (ELISPOT)
4. 免疫沉淀 (IP) 和染色質(zhì)免疫沉淀 (ChIP)
ELISA 是一種基于板的技術(shù),能夠檢測(cè)生物樣品中的抗原。與其他免疫測(cè)定一樣,ELISA 依靠抗體利用高度特異性的抗體-抗原相互作用來(lái)檢測(cè)目標(biāo)抗原。ELISA 能夠?qū)Ψ治鑫锖头肿酉嗷プ饔眠M(jìn)行定量和表征。
在 ELISA 中,抗原直接固定在固體表面上,或者更常見(jiàn)的是通過(guò)捕獲抗體固定在固體表面上,捕獲抗體本身也固定在表面上(圖 1)。清洗表面,然后與與酶或熒光團(tuán)等分子綴合的檢測(cè)抗體一起孵育。
在抗原存在的情況下,這些檢測(cè)抗體將保持與板結(jié)合,從而提供信號(hào)。該信號(hào)的強(qiáng)度對(duì)應(yīng)于樣品內(nèi)的抗原濃度。
圖 1.夾心 ELISA 設(shè)置。多孔板上的捕獲抗體將固定感興趣的抗原。該抗原將被與生物素和鏈霉親和素-HRP 綴合的檢測(cè)抗體識(shí)別并結(jié)合。
ELISA 通常在多孔板(96 或 384 孔)中進(jìn)行,分析物的固定有助于將抗原與其余樣品成分分離。這些特性使 ELISA 成為同時(shí)對(duì)多個(gè)樣品進(jìn)行的最簡(jiǎn)單的檢測(cè)方法之一。
ELISA 有四種主要類(lèi)型:直接法、間接法、夾心法和競(jìng)爭(zhēng)法,每種類(lèi)型都有獨(dú)特的優(yōu)點(diǎn)、缺點(diǎn)和適用性。每個(gè)實(shí)驗(yàn)最合適的 ELISA 形式取決于許多因素,包括所需的靈敏度、特異性和測(cè)定時(shí)間。詳細(xì)了解,請(qǐng)點(diǎn)擊elisa的類(lèi)型。
酶聯(lián)免疫斑點(diǎn) (ELISPOT) 用于檢測(cè)細(xì)胞分泌的蛋白質(zhì),例如細(xì)胞因子和生長(zhǎng)因子。該技術(shù)能夠量化和比較對(duì)各種刺激的免疫反應(yīng)。
細(xì)胞在帶有抗體包被的 PVDF 或硝酸纖維素膜的 96 孔板中生長(zhǎng)。使用一抗和綴合二抗檢測(cè)感興趣的分泌蛋白。分泌感興趣蛋白質(zhì)的細(xì)胞將顯示為彩色或熒光點(diǎn)。對(duì)膜進(jìn)行掃描和分析,以量化分泌蛋白質(zhì)的細(xì)胞的數(shù)量或比例。
蛋白質(zhì)印跡廣泛用于分離和鑒定蛋白質(zhì)的研究中。蛋白質(zhì)印跡使我們能夠檢測(cè)蛋白質(zhì),確定樣品之間的相對(duì)蛋白質(zhì)水平,并確定目標(biāo)的分子量,從而深入了解其翻譯后處理。
蛋白質(zhì)印跡涉及三個(gè)主要步驟:(1) 按大小分離蛋白質(zhì),(2) 將蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移到膜上,以及 (3) 使用一抗和二抗可視化目標(biāo)蛋白。
第一步,將蛋白質(zhì)加載到凝膠上,并通過(guò)凝膠電泳根據(jù)大小進(jìn)行分離。然后利用電流將蛋白質(zhì)條帶遷移到膜上。蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移到膜上是必不可少的,因?yàn)橛糜陔娪镜哪z為隨后的免疫染色提供了較差的表面,即抗體不會(huì)粘附到凝膠的蛋白質(zhì)上。
最后,膜可以用感興趣目標(biāo)的特異性抗體進(jìn)一步進(jìn)行免疫染色,并使用二抗和檢測(cè)試劑進(jìn)行可視化。
免疫沉淀 (IP) 是一種分離和純化單個(gè)蛋白質(zhì)和復(fù)合蛋白質(zhì)的多功能技術(shù)。在該技術(shù)中,抗體被固定在固相基質(zhì)(例如磁珠/瓊脂糖珠)上,從復(fù)雜溶液中捕獲抗原。
染色質(zhì)免疫沉淀 (ChIP) 用于確定給定蛋白質(zhì)是否在體內(nèi)與特定 DNA 序列結(jié)合。ChIP 使研究人員能夠識(shí)別整個(gè)基因組中感興趣的蛋白質(zhì)結(jié)合的特定基因和序列,從而為其調(diào)控功能和機(jī)制提供關(guān)鍵線(xiàn)索。
ChIP 程序(圖 3)利用抗體對(duì)感興趣的蛋白質(zhì)(例如轉(zhuǎn)錄因子)及其相關(guān) DNA 進(jìn)行免疫沉淀。然后回收相關(guān)的 DNA,并通過(guò) PCR、微陣列或測(cè)序進(jìn)行分析,以確定基因組序列和蛋白質(zhì)結(jié)合的位置。
免疫組織化學(xué) (IHC) 是一種利用抗體-抗原相互作用來(lái)了解組織切片中抗原的分布和定位的方法。盡管 IHC 的定量程度低于蛋白質(zhì)印跡或 ELISA,但它具有在完整組織中表征蛋白質(zhì)表達(dá)的優(yōu)勢(shì)。
IHC 通常用于診斷癌癥等疾病中的組織異常。IHC 提供了寶貴的觀(guān)點(diǎn)和支持,可以將從其他方法獲得的數(shù)據(jù)結(jié)合起來(lái)。
IHC 染色依賴(lài)于識(shí)別目標(biāo)抗原的抗體。您可以使用顯色或基于熒光的檢測(cè)系統(tǒng)來(lái)可視化這種抗體-抗原相互作用。在顯色檢測(cè)中,抗體與酶結(jié)合,當(dāng)暴露于顯色劑時(shí)會(huì)產(chǎn)生有色沉淀。在熒光檢測(cè)中,抗體與熒光團(tuán)綴合。樣品制備和可視化有多種技術(shù),所使用的方法應(yīng)根據(jù)您的標(biāo)本類(lèi)型和所需的靈敏度程度進(jìn)行定制。
免疫細(xì)胞化學(xué) (ICC) 用于使用標(biāo)記抗體研究蛋白質(zhì)的亞細(xì)胞分布。與 IHC 不同,該技術(shù)側(cè)重于細(xì)胞樣本而不是組織塊。
在 ICC 染色中,針對(duì)目標(biāo)蛋白質(zhì)產(chǎn)生的抗體應(yīng)用于已固定和透化的細(xì)胞培養(yǎng)樣品。ICC 有兩種類(lèi)型:直接和間接。直接 ICC 使用偶聯(lián)的一抗,而間接 ICC 涉及未偶聯(lián)的一抗,然后通過(guò)偶聯(lián)的二抗進(jìn)行檢測(cè)。對(duì)于大多數(shù) ICC 實(shí)驗(yàn),抗體都用熒光團(tuán)標(biāo)記,這對(duì)于共定位研究來(lái)說(shuō)是理想的選擇。各種成像技術(shù),例如寬場(chǎng)、共焦或旋轉(zhuǎn)圓盤(pán)顯微鏡,可用于檢測(cè)信號(hào)。
流式細(xì)胞術(shù)是一種流行的基于激光的技術(shù),用于分析細(xì)胞或顆粒的特征。該技術(shù)測(cè)量與混合群體中單個(gè)細(xì)胞結(jié)合的標(biāo)記抗體發(fā)出的熒光。此外,不同細(xì)胞對(duì)光的散射可用于確定它們的大小和特性。
流式細(xì)胞術(shù)使您能夠分析細(xì)胞表面和細(xì)胞內(nèi)分子的表達(dá),表征和定義異質(zhì)細(xì)胞群中的不同細(xì)胞類(lèi)型,評(píng)估分離亞群的純度,并分析細(xì)胞大小和體積。它允許同時(shí)對(duì)單細(xì)胞進(jìn)行多參數(shù)分析。
熒光激活細(xì)胞分選 (FACS) 是流式細(xì)胞術(shù)的衍生技術(shù),可根據(jù)熒光標(biāo)記將細(xì)胞群物理分離成亞群。